Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA)

La miel de Ulmo esta en wikipeadia como alternativa para el control de los Staphylococcus aureus resistentes a la meticilina (SARM).

"A 2010 study noted significant antimicrobial action of Ulmo 90 and manuka UMF 25+ honey against several microorganisms, including MRSA. The investigators noted the superior antimicrobial action of Ulmo 90 honey, and suggested it be investigated further.^[79] A separate 2010 study examined the use of medical-grade honey against several antibiotic-resistant strains of bacteria, including MRSA. The study concluded that the antimicrobial action of the honey studied was due to the activity of hydrogen peroxide, methylglyoxal, and a novel compound named bee defensin-1.^"

En septiembre pasado habíamos comentado sobre la referencia 79 anterior de wikipedia

Lo interesante es juntar las pistas. El Ulmo 90, tal como nos imaginamos en ese posteo de septiembre hacía referencia a su contenido de polen y no a su actividad antimicrobiana.

Ahora nos enteramos que el Ulmo 90 es en realidad Ulmo +18, y que ese +18 es un factor de graduación de su actividad peróxica. De acuerdo a la propuesta de Healing Honey International sería el UHPF, que yo quiero imaginar - que así como la Manuka tiene su UMF (Unique Manuka Factor - el Ulmo chileno tiene su UlmoHoneyPeroxideFactor o UlmoHydrogenPeroxideFactor- UHPF. O la "P" será por phenol standard %. UlmoHoneyPhenolFactor?

La verdadera pregunta es como un Ulmo +18 pasa a transformarse en un Ulmo +40 como el de las fotografías de las placas petri?

Y ante todo la incertidumbre de si la miel de Ulmo logra su potencia solamente por su peroxido de hidrogeno o por sus fenóles como lo sugieren las patentes de Gloria Montenegro.

2. Uso de un extracto fenólico de miel unifloral de ulmo {Eucryphia cordifolia) de acuerdo a la reivindicación 1, CARACTERIZADO porque dicho extracto tiene efecto bacteriostático y bactericida contra Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus grupo B-Hemolítico, Escherichia coli, Salmonella typhi, Klebsiella pneumoniae, Klebsiella oxytoca, Staphilococcus epidermis, Enterobacter aerogenes, Bacillus subtillis, Bacillus cereus, Serratia marcescens, y fungistático contra Candida albicans, Saccharomyces spp, mucor, Aspergillus spp., Penicillium spp.

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Staphylococcus aureus constituye un importante agente etiológico de diversas patologías infecciosas, entre las que destacan infecciones de piel y tejidos blandos, abscesos y septicemia¹.

En 196l, Jevons² describió por primera vez, en Londres, la aparición de cepas de Staphylococcus aureusresistentes a meticilina (SAMR), las que se han constituido en uno de los principales agentes de infección nosocomial a nivel mundial³.

En Chile, Lederman et al⁴ informaron por primera vez estas cepas en 1967. Desde entonces diversos autores han determinado una alta incidencia de infecciones por SAMR, especialmente nosocomiales, lo que implica un aumento en la morbilidad y mortalidad a nivel hospitalario^5,6.

El mecanismo de resistencia a meticilina más importante lo constituye la síntesis de una nueva proteína fijadora de penicilina o penicillin binding protein (PBP), denominada PBP2a, la cual es capaz de mantener la integridad de la pared celular durante el crecimiento y la división celular cuando las PBPs habituales son inhibidas por los antibióticos fi-lactámi-cos". Esta resistencia se debe a la incorporación en el ADN bacteriano de un elemento extracromosomal que contiene el gen mecA, encargado de codificar dichas proteínas. La expresión fenotípica de esta resistencia suele ser heterogénea, lo que significa que, a pesar que todas las células de una población poseen el gen, sólo algunas lo manifiestan, haciendo difícil su detección en el laboratorio por los métodos habituales⁵.

http://www.scielo.cl/scielo.php?pid=S0034-98872007000500007&script=sci_arttext

In the Big Leagues

Del posteo anterior me dieron ganas de volver a visitar el esfuerzo de Rio San Pedro por llevar a nuestras mieles del Bosque Valdiviano a las grandes ligas de las mieles curativas.

Y la sorpresa fue más grande que el precio de exportación US$FOB 9.1 por kilo del posteo anterior.

Impresionantes las imágenes de las placas petris y el control de Stafilos.

Pero más impresionante aún los precios retail a los que se están vendiendo las Rainforest Active Honey y como están al ladito de la Manuka y las Jelly Bush de nuestros vecinos pacíficos.

También muy interesante la cobertura de prensa y la campaña de marketing en UK.

Ahora hay que confiar que la recepción del mercado comprador sea excelente y algo de este aumento de valor de la miel de Ulmo y Tineo sea traspasada a los productores locales. Si al final los apiarios de Apizur están al otro lado del cerro de las abejas de Río San Pedro.

Veamos si chorrea.

Por otro lado, viendo las diferentes mieles activas, entre +10 y +40 me hace preguntarme si cuando nos compren la miel nos pagaran distinto según lo activa que sea nuestra miel, y antes que eso conocer cuál es el método con el cual se medirá su actividad. Se abre un nuevo desafío para el mercado. Al menos en mi blog ya hay accesos por IT sligo.

Flavonoides en Eucryphia

Después de la nota sobre la ultima patente de Gloria Montenegro y su equipo de la PUC, me dio por mirar más sobre flavonoides y Ulmo, caía en un lindo paper del 2000, "Variation in flavonoid exudates in Eucryphia species from Australia and South America" E. Wollenweber et al. / Biochemical Systematics and Ecology 28 (2000) 111 - 118.

Bien cagónes los latinos ... mejor aplicar la patente de Gloria en las mieles de Downunder!

Abstract

Leaf and bud exudate #avonoids were analysed for all Eucryphia species, and 28 compounds

were identi"ed. Cladistic analyses of phytochemical data indicate that the two Tasmanian

species, E. lucida and E. milliganii are sister taxa, which is consistent with morphological

studies. Cluster analysis and ordination would suggest that the species E. wilkiei from north

eastern Queensland is relatively isolated from other Australian and South American

taxa. ( 2000 Elsevier Science Ltd. All rights reserved.

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The family placement of Eucryphia is uncertain. Cronquist (1981) placed it in its

own family, Eucryphiaceae, based on a number of floral characters including the 4}14

(18), multi-ovulate, carpels and large solitary flowers, with prominent petals. Several

morphological characters e.g. interpetiolar stipules and pollen, however strongly

support its inclusion in Cunoniaceae (Hu!ord and Dickison, 1992; Hideux and

Ferguson, 1976). Phytochemical characters (Jay, 1968; Bate-Smith et al., 1977) have

also been interpreted by Hu!ord and Dickison (1992) as supporting its inclusion in

Cunoniaceae.

A correlation between tissue flavonoid chemistry and plant geography among

Eucryphia species was recognised by Bate-Smith et al. (1967). The authors studied the

five species E. cordifolia, E. glutinosa, E. lucida, E. milliganii and E. moorei, as neither

E. jinksii or E. wilkiei were known at that time. They reported seven flavonol

glycosides and one dihydroflavonol glycoside, along with two flavanol methyl ethers

that were found as aglycones from these five species.

In this study the flavonoids in leaf and bud exudates were recovered from all

Eucryphia species. The two Tasmanian species, E. lucida and E. milliganii, exhibit

conspicuous sticky exudates which cover the young buds (Forster and Hyland, 1997).

Eucryphia glutinosa is named after the sticky exudate that occurs on young foliage

and buds. These exudates are probably derived from colleters, that are present in all

species, and occur on the inner surface of the stipules that protect the developing buds

(Dickison, 1978; Rutishauser and Dickison, 1989).

3. Results and discussion

Twenty-eight flavonoids were identified from the seven Eucryphia species (Table 1).

The South American species E. glutinosa exhibits two flavones, apigenin-7, 4@-

dimethyl ether and luteolin-7,3@-dimethyl ether, which it shares with two Australian

and one Tasmanian species. The other South American species, E. cordifolia, contains

only apigenin-7,4@-dimethyl ether as a trace constituent. Both South American species

lack 3-hydroxylation, i.e. flavonols are missing. The two Tasmanian species, E. lucida

and E. milliganii, with their conspicuous bud exudates, are rich in flavone and flavonol

methyl ethers. These two species share 8 flavonoids (apigenin-7-methyl ether,

luteolin-7,3@,4@-trimethyl ether, kaempferol-3-methyl ether, kaempferol-3,7,4@-

trimethyl ether, quercetin-3-methyl ether, quercetin-3,7,4@-trimethyl ether, quercetin-

3,3@,4@-trimethyl ether and quercetin-3,7,3@,4@-tetramethyl ether) which are not

recorded from any other taxon. Four flavonoids (luteolin-3@-methyl ether, kaempferol-

3,7-dimethyl ether, kaempferol-3,4@dimethyl ether and quercetin-3-methyl ether)

are only produced by Eucryphia lucida, two others (luteolin-7,4@-dimethyl ether,

quercetin-3,4@-dimethyl ether) are only produced by E. milliganii. The southern

Australian mainland species (E. jinksii and E. moorei) also have a diverse range

of flavonoids. Four flavonoids, i.e. isoscutellarein-8,4@-dimethyl ether isoscutellarein-

7,8,4@-trimethyl ether, kaempferol-4@-Methyl ether, and quercetin-3,7,4@-trimethyl

ether, were identified from E. jinksii only. We want to stress that E. jinksii is the

only species capable of hydroxylating the 8-position. Another flavone, 6-OH-luteolin-

6,7-dimethyl ether, was also found to be present in only one species, E. moorei.

The S. Australian and the Tasmanian species are able to methylate the same hydroxyls.

E. wilkiei from north eastern Queensland is the only species where flavonoid

glycosides have been found as exudate constituents. Further, Eucryphia wilkiei,

E. jinksii and E. lucida. share a flavonoid aglycone whose identity remains to be established.